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本项目:(1) 建立具有人免疫系统人源化鼠平台。我们已经建立了具有人免疫系统的人源化鼠平台。该人源化鼠是通过共移植人胚胎胸腺组织和CD34+胎肝细胞建立的。在此人源化小鼠模型中,人T细胞在植入的人胸腺中发育,而且成熟的人T细胞在外周能与人抗原提呈细胞有效相互作用。基于在南方医科大学spf级实验动物中心支持,我们已成功实现在本实验室建立人免疫系统人源化小鼠。
(2) 建立高效的体外分化技术,得到可满足临床研究需求数量级的hESC分化的心肌细胞。我们采用高效的基因敲入技术,构建了经基因修饰而表达免疫抑制因子(CTLA4-Ig和PD-L1)的hESC(定名为:CP hESC),CP hESC的衍生细胞通过表达CTLA4-lg和PD-L1可有效地抑制同种异体免疫排斥(Rong et al., 2014, Cell Stem Cell 14:121-30)。H7 hESC可以高效地分化为心肌细胞,所以,我们已利用同样的基因修饰技术构建了CP H7 hESC。
首次利用具有人免疫系统的人源化小鼠研究人免疫系统对hESC分化的心肌细胞的异体免疫反应。
我们将hESC-心肌细胞注射到人源化小鼠的后腿骨骼肌中,发现CP H7 hESC-心肌细胞不被异体免疫排斥。然而,该方法带来了一个安全隐患:这些能逃逸机体免疫监控的hESCs衍生物有可能会带来癌症风险。
为了解决这个安全隐患,我们在hESCs中设置了一个安全检查点,当检测到由hESCs分化而来的移植物的细胞性状发生转化,这些移植物能被有效彻底的清除。我们在CP hESCs(敲入并且表达CTLA-Ig和PD-L1的人类胚胎干细胞)的HPRT基因位点上敲入了自杀基因单纯疱疹病毒胸苷激酶(HSVTK),建立了CPTK hESCs细胞株。
通过应用具有人类免疫系统的人源化小鼠模型(Hu-mice),我们证明了CPTK hESCs衍生而来的心肌细胞能耐受免疫排斥。另外,CPTK hESCs衍生的心肌细胞在体内或体外均能有效被FDA批准的TK靶向药物更昔洛韦有效的清除,极大提高其临床应用价值。
该研究成果已发表于Stem Cells。
建立hESC分化的心肌细胞避免同种异体免疫排斥的新策略。为了进一步验证CP H7 hESCs分化的心肌细胞的心肌功能,我们建立了大鼠MI模型,并移植了CP H7 hESCs和未修饰的hESCs分化的心肌细胞到MI的损伤部位。但即使有免疫抑制剂,CP H7 hESCs 分化的心肌细胞在一周内被排斥掉,导致无法验证其功能。
为了解决该瓶颈问题,我们建立了NSG(NODSCIDIL2R-/-)大鼠,在NK细胞、T细胞和B细胞缺陷的基础上进一步使单核细胞和巨噬细胞进行修饰,使得大鼠的单核细胞和巨噬细胞不吞噬人类的细胞移植,从而进一步提高移植成功率,也填补了业内研究的空白。
干细胞治疗研究作为我国未来重点研究的关键技术之一,我们团队的技术处于国际前沿,可抢占先机,具有很强的竞争力。经由广东省科技厅、南方医科大学等的大力支持下,已完成引进干细胞技术相关领域的领军人才3名,培养9名博士后博及博士、硕士研究生。
对于研究生教育,除了规定的研究生开题报告、中期考核和毕业答辩外,还定期进行文献汇报和工作报告,并邀请所内外专家学者进行学术报告,促进交流与合作。
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